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Elibo Biotechnology (Shanghai) Co., Ltd.
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ZFNs Tiermodell

VerhandlungsfähigAktualisieren am03/04
Modell
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Ursprungsort
Übersicht
ZFNs Tiermodelle: Zinkfingernuklease (ZFNs) Tiermodelle sind experimentelle Tiermodelle, die mit Zinkfingernuklease Genbearbeitungstechniken erstellt wurden. Zinkfingernuklease entsteht durch die Fusion von Zinkfingerprotein (ZFP) und Nukleatase (FokI), die spezifisch an die ZielDNA-Sequenz binden, während Nukleatase verantwortlich ist, die DNA zu schneiden, wodurch ein Doppelkettenbruch an bestimmten Genstandorten eingeführt wird und die Reparaturmechanismen der Zellen induziert wird, um Genknocks, Knocks oder Mutationen zu erreichen.
Produktdetails

Einer,ZFNs TiermodellTechnische Prinzipien und Kernmechanismen

ZFNs sindErste Generation programmierbarer GenbearbeitungswerkzeugeDurch die IntegrationDNA-Bindungsdomäne(Zinkfingerprotein) undDNA-Schnittdomäne(FokI Nukleatase) Zielbearbeitung:

  1. Zinkfingerproteindomäne

    • von30-34 Aminosäure-WiederholungseinheitenZusammensetzung, jede Einheit durch12. und 13. Bit variable Reste (RVDs)Identifizierung spezifischer Basis:

RVD Typ Identifizierung der Basis Spezifische
NI Ein Hoch
NG T Hoch
HD C Hoch
NN G/A mittel
  • Einzelne Zinkfingererkennung3 bp3-6 gezielte Ziele9-18 bpSequenzen.

  1. FokI Schnittbereich

    • BedarfDimensionierungZur Aktivierung der Schneidfunktion → Die ZFNs müssen gepaart ausgebildet sein (linker Arm/rechter Arm), wobei sich die Schneidstelle zwischen den beiden Armverbindungsstellen befindet (Abstand 5-7 bp).

  2. Bearbeitungsmechanismus

    • Doppelkettenfraktur (DSB) → Zellstart Reparaturwege:

  • Nicht-homogene Endverbindung (NHEJ)Zufällige Insertionen / Fehlen (Indels), die zu Genknockout führen.

  • Homogene Orientierte Reparatur (HDR)Exogene Reparaturvorlagen (z. B. ssODN) sind erforderlich, um Punktmutationen oder Geninsertionen zu realisieren.

Technischer Durchbruchshou UmsetzungSäugetiergenomzielbearbeitung(2005), das Zeitalter der präzisen Genbearbeitung zu beginnen.


Zwei,ZFNs TiermodellProzess- und Technologieoptimierung

a) Standardisierte Betriebsschritte

Optimierung der wichtigsten technischen Parameter

Schritte Kernbetrieb Innovative Optimierung
Ziel-Design Vermeiden Sie hohe Wiederholungs-/Methylierungsbereiche mit Intervallen von 5-7 bp Software-Vorhersage (ZiFiT) verbessert die Kombinationseffizienz
Zinkfinger Montage Modulare Reihenverbindung
  • 3-6 Zinkfingereinheiten in Reihe

  • Golden Gate-Klon (BsaI/BsmBI) | 6 Tage Fertigstellung, Erfolgsquote >80% |
    |AusdrucksträgerDual-Starter-Subträger (CMV/T7) zur Unterstützung der mRNA-Synthese und der Proteinexpression
    |LieferartMikroinjektion von befruchteten Eiern mit ZFNs mRNA

  • Somatische Zelltransfektion + Kerntransplantation (Großtiere) | Reduzierung der mRNA-Lieferung außerhalb des Ziels |
    |Reparatur Verbesserungen| Kombinierte ssODN-Vorlage + NHEJ-Inhibitor (SCR7) | Dreimal höhere HDR-Effizienz |


Anwendungsfälle und Modellvorteile für mehrere Arten

Typische Arten und Krankheitsmodelle

Arten Zielgen Krankheitsmodell Effizienz / Phänotype Forschungswert
Zebrafisch goldene Albinismus 95% F0 Prochromat fehlt Entwicklungsgenetisches Funktionsscreening
Mäuse Rag2/IL2rg Immundefizienzmodell Dual-Gen-Knock, eine humane Transplantationsplattform Tumor Immunyi Therapie Studien
Schwein GGTA1 Modell der Transplantation von Guan Eliminiert das α-Gal-Antigen und reduziert die superakute Ablehnung Humanisierte Organentwicklung
Fruchtfliegen gelb Körperfarbemutationen Genitalmutationsrate 5,7% (Tiermodell) Konservative Validierung der genetischen Funktion

2. Unersetzliche Anwendungsszenarien

  1. Bearbeiten von Regionen mit hohem GC

    • Ohne PAM-Sequenzbegrenzung können Bereiche ausgerichtet werden, die mit CRISPR/Cas9 nicht bearbeitet werden können.

  2. Niedriger Off-Target-Bedarf

    • Offtarget-Rate bei therapeutischer Bearbeitung < 0,1% (CRISPR 1-10%).

  3. Große Tiermodelle

    • Schweine und Rinder sind weniger immun als CRISPR.